四川重组药物支原体检测可比性验证

菌株质量是支原体检测 NAT 方法验证合规的关键，GC/CFU 比（基因组拷贝数与菌落形成单位比值）是关键控制指标。支原体存在聚集特性，单一 CFU 可能对应多个菌体，且 DNA 复制与细胞分裂不同步，部分菌体无法形成菌落但会释放 DNA，导致 GC/CFU 比波动大（研究报道 0.1 CFU 对应 30-500 个基因组拷贝）。若使用高 GC/CFU 比菌株，会高估检测限、导致方法灵敏度不足，因此法规明确要求菌株 GC/CFU 比＜10。2024 年 EDQM 36.1 草案规定参考品 GC/CFU 比应小于 10，USP 77 征求意见稿要求表征菌株 GC/CFU 比、建立菌株库 CFU 与核酸拷贝数关系，JP G3-14-170 也对菌株质量提出明确要求，凸显合规菌株选择的重要性。

湖州申科的支原体验证菌株以高稳定性与合规性为重点优势，满足 NAT 方法验证需求。菌株来源可靠，均取自国内外合规机构验证菌株标准盘，溯源至美国 ATCC（口腔、肺炎支原体）、中国 CVCC（猪鼻支原体）等正规保藏机构，获正式商用授权，标定浓度涵盖 10CFU 与 100CFU。生产环境合规，在 BSL-2 生物安全实验室开展，符合国家生物安全法标准，针对不同菌株特性逐个优化生产工艺，涵盖超 10 种菌株的主代与工作代。质控环节严谨，采用高灵敏度培养基（液体、固体、半流体），保障菌落易观察分离与 CFU 计数准确性；冻存前后均通过固体平皿培养法测定 CFU，联合合规机构建立数字 PCR 标定方法，经实验室间对比验证，准确监控 GC/CFU 比，确保菌株质量达标。

长期以来，支原体检测主要依赖培养法和指示细胞法，且法规通常要求两种方法同时使用，但这两类方法存在明显短板——培养法检测周期长达 28 天，指示细胞法也需较长时间等待结果。随着细胞疗法药物快速发展，其上市周期短、货架期有限的特点，使得传统方法难以满足药物放行的时效要求。核酸扩增技术（NAT）尤其是荧光探针 qPCR 检测方法的出现，凭借检测速度快、特异性强的优势，成为支原体检测的理想替代方案。作为替代方法，NAT 检测需通过严格验证以达到法规要求的灵敏度：检测限达到 10CFU/mL 可替代培养法，达到 100CFU/mL 可替代指示细胞培养法，从而实现快速且可靠的支原体筛查。

支原体 NAT 检测的样本结果需结合 FAM 信号与 VIC 信号的表现综合判定，同时警惕抑制现象对结果的影响。若 FAM 信号 2 复孔有 1 孔以上 Ct<40 且呈有效 “S” 型扩增，VIC 信号 2 复孔 Ct<40 且呈有效 “S” 型扩增，判定为阳性；若 VIC 信号 2 复孔 Ct≥40 或无明显扩增曲线，则为阳性但存在抑制。若 FAM 信号 2 复孔 Ct≥40 或无明显扩增曲线，VIC 信号 2 复孔 Ct<40 且呈有效 “S” 型扩增，判定为阴性；若 VIC 信号同样 Ct≥40 或无明显扩增曲线，则阴阳性无法判断且存在抑制。出现抑制现象需重测，重测仍有抑制时，阳性倾向样本可适当稀释，阴性倾向样本需优化提取条件。

支原体检测培养法是生物制剂质量控制的关键环节，湖州申科提供的 USP 支原体培养法检测服务，严格遵循USP<63 mycoplasma tests（culture method）>标准，为生物制剂开发与生产提供可靠保障。该方法适用于检测组织或细胞培养物、消化肉液及其他疑似支原体污染的材料，是确保生物技术产品及生产用材料合规性的必要要求。检测周期约 29 天，流程需满足双重要求：每批次培养基必须进行营养特性测试，确保检测效能；供试品需完成抑制物质检测，若生产方法发生变化可能影响检测结果，需重复该测试，避免抑制成分干扰支原体检出，保障检测结果的准确性与可靠性。

支原体 NAT 检测中异常曲线的出现多与操作设置、耗材使用或实验环境相关，需针对性排查解决。首先需确认软件设置正确性，对照试剂盒说明书检查时间、温度、循环数、荧光采集等参数，尤其需注意关闭不含 ROX 试剂的参比荧光功能。其次若扩增曲线无抬升却出现 CT 值，需调整基线范围，将起点设为荧光信号稳定的循环数，终点设为扩增曲线起峰前一个循环数。再者需确保耗材与仪器匹配，避免使用普通 PCR 耗材或与加热模块规格不符的反应管，防止荧光传导不佳或热传导不充分。此外，曲线先上升后下降可能是反应液蒸发导致，上机前需检查八连管管盖无缝隙，避免液面下降干扰结果。