山东细胞疗法产品支原体检测试剂盒

支原体检测 NAT 方法验证需满足全球药典对检测限、专属性、耐用性、可比性等关键指标的要求，且 EP、USP 新草案提出更严格标准。检测限（LOD）方面，EP 要求针对每种支原体确定临界值，需 3 次单独 10 倍梯度稀释、共 24 个检测数据，95% 检出浓度达标；USP 要求标准菌株浓度≤10 CFU/mL 或 100 GC/mL，≥24 次检测数据支持统计分析；ChP 未明确支原体专属要求，但需满足 “微生物检出下限数量” 设定标准。专属性上，EP 建议测试革兰氏阳性菌交叉污染，USP 要求生信分析与实际样品验证结合，ChP 强调外来成分不干扰试验。耐用性方面，EP 需验证试剂浓度、提取与反应程序变化，USP 涵盖设备、反应体系等参数波动。可比性上，EP 要求 NAT 法与药典法 LOD 及特异性对比，替代培养法需达 10 CFU/mL，替代指示细胞法需达 100 CFU/mL，USP 则视样品基质情况要求可比性研究。

MycoSHENTEK^® 支原体 qPCR 检测试剂盒（2G）完全符合 EP 2.6.7 的全部验证要求，其检测灵敏度、特异性、耐用性均按药典标准完成完整性能验证，具备替代培养法和指示细胞培养法的合规资质。该试剂盒针对新型生物制品的检测痛点优化升级，经多种支原体菌株验证，灵敏度稳定达到 10 CFU/mL，满足法规对替代培养法的要求。同时，产品遵循 ISO13485 体系认证和 GMP-like 生产标准，可提供完整的验证报告、质检报告及菌株溯源文件，全程贴合各国药典监管要求，为企业合规检测提供坚实支撑。

长期以来，支原体检测主要依赖培养法和指示细胞法，且法规通常要求两种方法同时使用，但这两类方法存在明显短板——培养法检测周期长达 28 天，指示细胞法也需较长时间等待结果。随着细胞疗法药物快速发展，其上市周期短、货架期有限的特点，使得传统方法难以满足药物放行的时效要求。核酸扩增技术（NAT）尤其是荧光探针 qPCR 检测方法的出现，凭借检测速度快、特异性强的优势，成为支原体检测的理想替代方案。作为替代方法，NAT 检测需通过严格验证以达到法规要求的灵敏度：检测限达到 10CFU/mL 可替代培养法，达到 100CFU/mL 可替代指示细胞培养法，从而实现快速且可靠的支原体筛查。

细胞和基因治疗领域正加速发展，国内以 CAR-T、间充质干细胞、AAV 基因治疗等新型生物制品势头正盛。这类产品与传统制药差异明显，给支原体检测带来全新挑战：批产量小但批次多，多数待检测样品含高达 10⁷个活细胞，且基质复杂如高蛋白、全血、高浓度质粒等。更关键的是，新型生物制品终末灭菌难度极大，需从起始材料、原物料到全工艺过程严格控污，而支原体污染隐蔽性强、危害大，成为质量安全控制的主要痛点，也推动着检测方法向更高效、抗干扰的方向升级。

为解决支原体检测的污染难题，湖州申科推出AdvSHENTEK^® 外源因子全自动核酸检测分析系统 + 一体化支原体检测卡盒的组合方案，以全封闭设计从根源规避污染。该方案只需一步开盖加样，后续流程完全封闭运行，物理隔绝核酸气溶胶污染，搭配 UNG 酶系统可进一步防止环境交叉污染，能节省 100% 污染排查时间。一体化检测卡盒相当于单独的迷你 qPCR 实验室，集成试剂准备、样品制备、扩增、分析全流程，无需复杂分区。同时，方案降低了对实验环境和人员的要求，普通实验室即可开展检测，人员经简单培训就能操作，彻底摆脱了传统 NAT 法对高技能人员和场地的依赖，大幅提升检测结果的稳定性。

可比性验证是支原体检测 NAT 方法替代传统检测方法的关键依据，法规明确要求需将 NAT 法与药典规定的传统方法进行检测限（LOD）对比。若以 NAT 法替代培养法，需证实其检测限≤10CFU/mL；替代指示细胞培养法时，每种被测支原体的检测限需≤100CFU/mL。对比实验需采用相同样本同步开展 NAT 检测与传统方法检测，通过 CFU 可比性分析，确保两种方法的检测结果具有一致性。这一要求既保障了新方法的检测效能不低于传统标准，又为生物制品企业切换检测方法提供了合规依据，兼顾了效率提升与质量安全。