胶原的立体结构与一般的球状蛋白质完全不同,每一条亚基形成一股左手旋转的螺旋,其中每3个氨基酸残基形成一圈螺旋。3条左手螺旋再扭在一起形成一个右手大螺旋。这样的螺旋称为3股螺旋。小的甘氨酸残基位于3股螺旋内部。3股螺旋式的棒状胶原分子的大小约是3000×15埃,这些棒状分子首尾相连,并侧向排列形成胶原微丝(其直径可从50埃至数千埃)。胶原分...
查看详细 >>PAS染色试剂配制及染色方法:1.材料与方1.1实验材料新鲜小白鼠肝脏、肾脏标本各30例,均来自我室实验材料。1.2主要试剂1.2.1AAF固定液又称酒精醋酸福尔马林混合固定液,其配方:无水乙醇80mL,冰醋酸5mL、甲醛10mL。1.2.2Carnoy固定液氯仿300mL,冰醋酸100mL,95%酒精600mL。1.2.3过碘酸溶液0....
查看详细 >>转染效率:线型PEI(LinePEI,LPEI)与其衍生物用作基因转染载体的研究比分枝状PEI(BranchedPEI,BPEI)要早一些,过去的研究认为在不考虑具体条件,LPEI/DNA转染复合物的细胞毒性较低,有利于细胞定位,因此与BPEI相比应该转染效率高一些。但较近研究表明BPEI的分枝度高有利于形成小的转染复合物,从而提高转染效...
查看详细 >>粘液染色法:粘液一般有以下几点特性:(1)对盐基性染料有亲合力,因此在HE染色中、切片上的粘液呈污秽蓝色。(2)对某种盐基性人工合成染料如硫堇或甲苯胺蓝有异染性。(3)遇醋酸发生沉淀,胃粘蛋白则除外。(4)溶于弱碱溶液。常用的粘液染色有以下几种:1、P.A.S染色法:操作方法同前,结果;中性粘液性物质,某些酸性粘液物质呈红色,核呈蓝色。2...
查看详细 >>这种有限的分裂能力体内的细胞相似,一旦细胞在体内完全分化以发挥其特殊功能,细胞将停止增殖-这是固有的保护性衰老过程。此外,某些原代细胞有丝分裂后,无论是在体内或体外培养中都不增殖(例如,神经元,骨骼肌细胞,心肌细胞,周细胞,终末分化的肝细胞)。因此,每次进行实验后,原代细胞培养都需要再次从新鲜的组织中解离。原代细胞应用困局:经过一次传代后...
查看详细 >>鼠尾胶原蛋白耗子尾汁还能变得更加,一种被称作鼠尾胶原蛋白的“珍贵”液体就来自大鼠的尾巴,制作过程需要经历醋酸抽提、氯化钠沉淀和磷酸氢二钠沉淀等步骤,才能从鼠尾中获得珍贵的胶原蛋白。这种胶原蛋白在37℃的条件下会形成3股螺旋结构,可以用来当作细胞培养的基质。细胞培养过程中,细胞需要贴附在培养皿表面(悬浮培养细胞除外)才能完成生长过程,而有一...
查看详细 >>细胞转染那些事儿:1.选择传代次数较低并处于对数生长期的细胞进行转染。对大多数细胞而言,均需要在转染当天或前现在铺板,第二天上午进行转染,48h后收集细胞进行功能检测。对于原代细胞,可用促有丝分裂刺激物进行细胞活化。2.对于贴壁细胞,一般要求在转染前一日,用胰酶处理为单细胞悬液,重新接种于培养皿或瓶,较好在转染前4小时换一次新鲜培养液。3...
查看详细 >>细胞转染方法:1.脂质体转染法阳离子脂质体表面带正电荷,能与核酸的磷酸根通过静电作用,将DNA分子包裹入内,形成DNA脂复合物,也能被表面带负电的细胞膜吸附,再通过融合或细胞内吞进入细胞。脂质体转染适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前实验室较方便的转染方法之一,其转染率较高,优于磷酸钙法。由于脂质体对细胞有一定的毒性,所以转染...
查看详细 >>糖原PAS过碘酸雪夫染色试剂盒简介糖原染色是病理学中常规的染色方法之一,McManus在1946年先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白,该法常用来显示糖原和其他多糖,该染色液不仅能够显示糖原,还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质,以及软骨、垂体、霉菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸(又称高碘酸)是一种强氧化剂,它能氧化糖类及有关物质中的1...
查看详细 >>细胞转染的注意事项:物品(PS)物品,比如青霉素和链霉素,是影响转染的培养基添加物。这些物品一般对于真核细胞无毒,但阳离子脂质体试剂增加了细胞的通透性,使物品可以进入细胞。这降低了细胞的活性,导致转染效率低。所以,在转染培养基中不能使用物品,甚至在准备转染前进行细胞铺板时也要避免使用物品。这样,在转染前也不必润洗细胞。对于稳定转染,不要在...
查看详细 >>糖原染色在使用过程中需要注意以下几个方面:尽可能选取小块新鲜组织及时固定。糖原易溶于水,在酶的作用下很容易分解葡萄糖,更易溶于水,固定之前决不能用水或生理盐水等浸洗。应避免用水溶性固定液,宜采用酒精性固定液,如Carnoy液,能较好地保存糖原,但有使糖原流动到细胞一侧的现象,多数人认为是由于固定剂把细胞内的糖原推向固定剂对组织浸透的方向而...
查看详细 >>含细胞三维胶原凝胶的制备(以配制1mg/mL三维胶1mL为例)准备好悬浮于培养液的细胞,并放置于冰浴中。将200μL本品加到12μL0.1mol/LNaOH中(如果反过来把12μL0.1mol/LNaOH加到胶原溶液中,会由于NaOH不能迅速混匀而产生局部的胶原凝结),立即混匀。再加入23μL10×PBS或10×培养液,混匀后立即加到培养...
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