金华太原无血清细胞冻存液

无血清细胞冻存液与传统细胞冻存液比较及优势：1.传统细胞冻存液只适用于含血清细胞的冻存，但并不适用于无血清培养的细胞，例如一些CIK细胞等，而无血清细胞冻存液即适用于含血清细胞的冻存，又适用于无血清细胞的冻存，是一种通用型细胞冻存液，通用于各种动物细胞株；2.传统细胞冻存液含10%胎牛血清，因血清是动物源性成份，因此病毒、霉菌和支原体等污染的风险很高，而无血清细胞冻存液因不含血清，只含DMSO、葡萄糖等营养成份，较大降低了动物血清来源病毒、霉菌和支原体等污染的风险，确保冻存细胞的安全；3.传统细胞冻存液含血清，但动物血清成分复杂，个体差异大，且生产来源不稳定，因此批次间质量常常不稳定，这导致培养细胞的状态也会受到影响，而无血清细胞冻存液成分和配比明确，批次间差异很小，能够保证生长细胞状态的稳定性，细胞存活率高。无需程序降温，细胞复苏率90%以上。金华太原无血清细胞冻存液

无血清细胞冻存液对比含血清细胞冻存液的优势：细胞冻存是细胞培养技术中细胞进行保种并长期保存的常用方法，其中细胞冻存液，作为细胞冻存时必须使用的一种溶液，不仅*是说只是用来进行细胞的保存，在细胞的购买、寄赠、交换和运送过程中也起着关键作用，因此选择一款好的细胞冻存液就尤为重要。如果不加任何条件直接冻存细胞，细胞内和外环境中的水都会形成冰晶，能导致细胞内发生机械损伤、电解质升高、渗透压改变、脱水、pH值改变、蛋白变性等，从而引起细胞死亡。而细胞冻存液就相当于细胞的保护剂，在冻存细胞时将细胞悬浮于冻存液中，可使冰点降低，提高细胞膜对水的通透性，在缓慢的冻结条件下，能使细胞内水份在冻结前透出细胞，可以防止或减少冷冻冰晶对细胞的损伤作用。这样就使细胞暂时脱离生长状态而将其细胞特性保存起来，在需要时直接复苏就可恢复细胞活性。金华太原无血清细胞冻存液待冻存管中细胞混合液完全融化后，立即加入1 ml细胞培养基于该冷冻管中与细胞混合。

细胞冻存注意事项：离心问题：目前主要有两种见解。一种是解冻后的细胞悬液直接吹打均匀后分装到培养瓶中进行培养，第二天换液。因为离心的目的是两个，去除DMSO，去除死细胞，这个是标准流程，但对一般人来说，把握不好离心转速和时间，转的不够活细胞沉底的少，细胞就全被扔掉了，转过了活细胞会受压过大，死亡。此外在操作过程中容易污染，所以不推荐。另一种说法为细胞悬液中含有二甲基亚砜（DMSO），DMSO对细胞有一定的毒副作用，所以须将离心后的液体前倒净，且一定倒干净。我在试验中按照常规的离心分装的方法进行复苏，结果无有异常。

无血清细胞冻存液：解冻解冻后，应该立即铺板在预先包被好的培养皿中。上述冻存的一管细胞可以成功的铺板到6孔板的 1 - 2孔。1. 开始之前，提前准备好以下材料：试管，恢复至室温的培养基，预先包被的培养板，确保整个解冻复苏程序可以在较短的时间内完成。注意：不要在37°C水浴中加热培养基。2. 在37°C水浴中快速解冻，持续温和的在水中晃动冻存管，直到剩余少量细胞还处于冻存状态。3. 水浴中取出冻存管，用70%的酒精或异丙醇擦拭除菌。4. 用2 mL的血清移液管把细胞悬液转移到一个15 mL的锥形试管。注意：用2 mL的血清移液管代替1 mL的头可以减少细胞聚集体的分解。反复吹吸混匀后，分装于细胞冻存管中，每管500ul-1000ul。

细胞冻存，我们应该注意哪些事项：DMSO快速稀释会对细胞造成渗透性损伤，使存活率下降50%。对于DMSO冻存的细胞，复苏后应缓慢稀释成细胞悬液：1）冻存液：培养基=1:1稀释成细胞悬液后离心，然后重悬至培养皿中培养，隔天换液；2）冻存液：培养基=1:10稀释成细胞悬液，不用离心，直接放置到培养瓶中培养2-4小时后，换液。上述两种方法都是比较常用的细胞复苏方法，后者更适用于原代细胞或比较难养的细胞。液氮内的细胞冻存较长时间不要超过半年，冻存在液氮中的细胞应一段时间内进行更替。一个细胞系在培养一个月后，可复苏一管新的细胞确保其质量没有发生太大变化，传代几次后，再冻存留种。无血清细胞冻存液：冻存细胞复苏率在90%以上。贵阳无血清细胞冻存液服务电话

可以在冰晶形成之前，优先结合细胞外的水分子。金华太原无血清细胞冻存液

无血清细胞冻存液：采用patent的冻存配方，用包括重组人血白蛋白等多种蛋白组分替代了血清的用途。用包括DMSO在内的复合冻存保护剂替代了单一的DMSO的保护作用。复合保护剂的内部保护剂，易于穿透细胞膜，避免在细胞冻存过程中细胞内部的水分子形成冰晶损伤细胞；外部保护剂，可在溶液形成冰晶之前，在细胞膜外部竞争性的结合细胞膜表面的水分子，从而降低细胞外溶液的电解质浓度，减少阳离子进入细胞的数量。在细胞内部与外部的协同保护作用下，明显降低了温度迅速下降与温度上升对细胞的损害，因此大幅度提高了细胞经过冻存后的复苏存活率。金华太原无血清细胞冻存液