在免疫学和学研究,常需同时监测多个细胞因子或信号蛋白的磷酸化状态。基于微珠的多重均相发光检测系统(如Luminex xMAP技术结合化学发光检测)应运而生。该系统使用不同颜色编码的微球作为固相载体,每种微球包被一种特异性捕获抗体。样本中的多种靶标被各自捕获后,再用生物素化检测抗体和链霉亲和素-荧光/发光报告分子进行检测。虽然微球是固相,但整个反应在悬浮液中进行,读数前无需洗涤,本质上也是一种高效的“液相”或“悬浮芯片”式多重均相检测。浦光均相发光检测试剂盒,操作简便,快速获得可靠结果!北京均相化学发光均相发光应用领域

干细胞的多能性维持、定向分化及其功能评估,需要可靠的检测方法。均相化学发光技术可用于:多能性标记物检测:通过均相免疫分析定量细胞裂解物中OCT4、SOX2、NANOG等蛋白的水平。报告基因细胞系构建:将多能性特异性或分化特异性启动子与荧光素酶基因连接,通过检测化学发光信号来无损、实时监测干细胞状态变化,用于筛选维持干性或诱导分化的因子。分化细胞功能评估:如心肌细胞分化后,可通过钙离子敏感的化学发光染料检测其自发搏动引起的钙瞬变,评估功能成熟度。这些方法为干细胞质量控制和研究提供了有力工具。广东化学发光均相发光应用领域均相化学发光,国家重点实验室检测平台,领航医疗新时代!

GPCR是比较大的药物靶点家族,其功能研究涉及配体结合、第二信使产生、下游信号通路活化等多个层面。均相发光技术多方面渗透于此领域。对于配体结合竞争实验,可采用TR-FRET,将受体标记供体,配体标记受体。对于GPCR活化后比较关键的cAMP积累或IP3/DAG产生,均有成熟的均相检测试剂盒。例如,cAMP检测常采用基于抗体竞争原理的均相发光免疫分析。细胞裂解后,内源性cAMP与加入的标记cAMP竞争结合有限量的抗cAMP抗体。抗体结合事件通过FRET或Alpha技术被检测,信号强度与内源性cAMP浓度成反比。这类方法直接在细胞裂解液中进行,快速、灵敏,完美契合GPCR激动剂/拮抗剂的高通量筛选。
均相化学发光技术因其超高的通量、灵敏度和易于自动化的特性,已成为现代药物发现高通量筛选(HTS)的支柱技术。在靶点导向的筛选中,它广泛应用于:激酶/磷酸酶抑制剂筛选(通过检测磷酸化底物的量)、GPCR功能分析(检测cAMP、IP3或β-arrestin招募)、核受体转录活性筛选(报告基因检测)、蛋白-蛋白相互作用抑制剂筛选(如使用Alpha技术)、以及酶活性分析(蛋白酶、去乙酰化酶等)。其“混合-读数”的模式允许在1536孔甚至更高密度板中进行超大规模化合物库(数十万至上百万)的筛选,每天可产生海量数据,极大加速了先导化合物的发现进程。均相化学发光技术怎样提高检测的灵敏度和特异性?

荧光共振能量转移(FRET)是均相发光技术中应用比较多方面的信号产生机制之一。其原理是:当一个荧光基团(供体,Donor)的发射光谱与另一个荧光基团或淬灭基团(受体,Acceptor)的吸收光谱有足够重叠,且两者距离非常接近(通常1-10纳米)时,供体的激发态能量会以非辐射方式转移给受体。在均相检测中,常将供体和受体分别标记在相互作用的生物分子对(如一对抗体、或酶与底物肽)上。当目标分子存在并促使这对生物分子结合时,供体与受体被拉近,发生有效的FRET,导致供体荧光淬灭,受体荧光增强(如果受体是荧光团)。通过监测供体与受体荧光强度的比率变化,即可高灵敏度、高特异性地定量目标分析物。医疗新时代!均相发光,助力疾病早筛早诊!北京均相化学发光均相发光应用领域
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评估疫苗免疫效果或康复者血清中和能力的关键是病毒中和抗体检测。传统的空斑减少中和试验(PRNT)耗时费力。基于假病毒系统的均相发光中和试验已成为高通量替代方案。将表达荧光素酶的报告基因包装进假病毒颗粒(携带目标病毒的囊膜蛋白)。当假病毒炎症细胞时,会驱动荧光素酶表达。如果样本中存在中和抗体,则会阻断炎症,导致荧光素酶信号下降。检测时只需在炎症后裂解细胞并加入发光底物,即可实现快速、定量、高通量的中和抗体滴度测定,在COVID-19等疫病中发挥了重要作用。北京均相化学发光均相发光应用领域
热迁移分析(CETSA)用于研究药物在细胞或组织水平与靶蛋白的结合,传统方法依赖Western Blot,通量低。与均相化学发光免疫检测(特别是Alpha技术)结合形成的CETSA HT,实现了高通量化。细胞经药物处理和不同温度加热后裂解,针对目标蛋白的特异性抗体对(分别偶联Alpha供体珠和受体珠)被加入裂解液。只有未因热变性而沉淀的、保持天然构象的蛋白才能被两个抗体同时识别并拉近微珠产生信号。通过绘制药物处理组与对照组的热稳定性曲线,可以直观看到药物结合引起的蛋白热稳定性偏移(Tm变化),从而确认靶点结合并评估结合强度,广泛应用于早期药物发现中的靶点确证。均相化学发光技术的未来发展趋势是什...